Multiphoton Microscope Leica TCS SP8 MP

Profondeur codage couleur.

Avec l'aimable autorisation de l'échantillon du Dr Mark Lessard, The Jackson Laboratory, Bar Harbor, Maine, Etats-Unis.

Expression de la GFP cytoplasmique dans la notochorde et la plaque préchordale, 980nm. Noyaux tache grâce à l'injection d'ARN H2B-mCherry, 1030 nm.

Gracieuseté de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif Yvettes, France.

Adulte Thy1-EYFP H ligne souris, in vivo (fenêtre crânienne), 800 um z pile.

Courtoisie du Dr Masahiro Fukuda, Département de Molecular Therapy, l'Institut national de neurosciences, Centre national de neurologie et de psychiatrie, Kodaira, Tokyo, Japon.

Injection de l'ARN pour la coloration par GFP farnésylée (membranes, 980nm) et H2B-mCherry (noyaux, 1030nm).

Gracieuseté de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), le Dr Sylvie Rétaux, le Dr Hélène Hinaux et le Dr Gaëlle Recher, CNRS, Gif sur Yvette, France.

L'imagerie en direct de Microglias dans, une souris éveillé en direct

Courtoisie du Dr Masahiro Fukuda, Département de Molecular Therapy, l'Institut national de neurosciences, Centre national de neurologie et de psychiatrie, Kodaira, Tokyo, Japon.

Section de testicules de souris exprimant dTomato (OPO).

Avec l'aimable autorisation de l'échantillon du Dr Mark Lessard, The Jackson Laboratory, Bar Harbor, Maine, Etats-Unis.

Coloration des noyaux par injection d'ARN (H2B-eGFP, 980nm); membrane à travers la baignade dans FM4-64 (1030nm).

Gracieuseté de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif Yvettes, France.

Mouvement de calcium après la blessure de podocytes (en bas à droite) dans un glomérule d'une souris d'GCaMP3. L'étiquetage de la vascularisation par Texas Red.

Gracieuseté de Dr. Matthias Hackl, Clinique universitaire de Cologne, Allemagne.

Ébauche de la ligne latérale marqué avec la GFP (Green), les neurones avec DsRed (rouge), le noyau avec BFP (bleu). Le signal SHG de muscles (gris).

Courtoisie du Dr Lionel Newton, EMBL Heidelberg, Allemagne.

Tyrosine hydroxylase neurones positifs (rouge), SHG à 1080nm (vert), Dapi (bleu).

Courtoisie du Dr Rafael Drigo, Per-Olof Berggren laboratoire, Lee Kong Chian Ecole de médecine (LKCSoM), Singapour.

4D laps de temps, 420 cheminées, 3 canaux superposition: ARN H2B d'injection (bleu), mCherry (rouge), EGFPras (vert).

Gracieuseté de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif Yvettes, France.

THG (en bleu); 20x1NA; InSight à 1140 nm.

Gracieuseté de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif Yvettes, France.

Signal de SHG à partir de collagène (gris).

Thy1-YFP cerveau de souris traitée avec CLARITY

Courtoisie du professeur Karl Deisseroth et le Dr Raju Tomer, l'Université de Stanford, Palo Alto, CA, USA.

Nature vidéo révèle comment Karl Deisseroth et son équipe ont créé des visualisations 3D de cerveaux de souris en utilisant CLARITY et marquage fluorescent.

Profondeur de 1,5 mm.

Gracieuseté de Dr. Günter Giese et Annemarie Scherbarth, MPI Heidelberg, Allemagne.

Génération de seconde harmonique (SHG) - aussi appelé doublement de fréquence - est un processus optique non linéaire qui peut être observée dans des milieux sans une symétrie d'inversion. Deux photons avec la même fréquence d'interagir avec un matériau non linéaire se transforment en une qui a exactement la moitié de la longueur d'onde de la lumière incidente. En d'autres termes l'énergie et la fréquence de photon émis est doublé en comparaison à celle de l'échantillon entrant.

Bourgeon urétéral d'un jour embryonnaire 16 rein d'une souris HoxB7 EGFP.

Gracieuseté de Deborah Hyink, Mount Sinai School of Medicine, New York, NY, USA

Souris glande mammaire (à gauche) et la rate (à droite). Les vaisseaux sanguins marqués avec 70kD-Texas Red excités avec OPO à 1150 nm (rouge). Excitation simultanée à 800 nm dans les résultats de la deuxième génération de signal harmonique (SHG) du collagène de type I (violet) et autofluorescence des cellules individuelles (en vert).

Gracieuseté de Evelyne Beerling, Jacco van Rheenen, Hubrecht Institut, Utrecht, Pays-Bas

Reconstructions 3D de 50 um représentatifs z-piles des acquisitions timelapse. Excitation à 910 nm, démixage spectral a été réalisée en utilisant le logiciel LAS AF.

Gauche: Les microglies marqué avec la GFP (vert) sont présentés dans le cadre de vaisseaux sanguins injectés avec 655 points quantiques nm (rouge) résidant dans le parenchyme cérébral. Certains procédés ont leurs microglie enroulés autour des vaisseaux sanguins. Génération de seconde harmonique (SHG) os du crâne (bleu).

Droite: Spleen sept jours suivant l'infection par le virus de la chorioméningite lymphocytaire (LCMV). Anti-virale CD8-PCP (rouge) et CD4-YFP (vert) des cellules T.

Gracieuseté de Debasis Nayak, Bernd Zinselmeyer et Dorian McGavern, Institut national des troubles neurologiques et des maladies, NIH, Bethesda, MD, USA

Coeur embryonnaire du poisson zèbre, 100 um de profondeur. Les cellules sanguines marquées avec DsRed (rouge), SHG de muscle (gris).

Le timelapse sur le droit a été acquis avec le scanner de résonance à 167 images / seconde à 512 x 64 pixels. Multiphoton excitation à 1100 nm avec OPO.

Gracieuseté de Julien Vermot, IGBMC, Strasbourg-Illkirch, France

Signal de second harmonique génération à partir de muscles (rouge), les neurones moteurs (vert).

Gracieuseté de Rüdiger Rudolf, Institut de toxicologie et de génétique, Institut de technologie de Karlsruhe, Allemagne.

La probabilité d'excitation dans une excitation à photons (à gauche) dépend linéairement de la quantité de photons à partir de la source lumineuse. Dans excitation à deux photons (à droite) est proportionnelle au carré de l'intensité de la source lumineuse et limitées au voisinage du plan focal.

Les niveaux d'énergie d'un fluorophore dans un photon (à gauche) et à deux photons (à droite) excitation. Les couleurs correspondent aux longueurs d'onde absorbées et émises.