STED – Superresolución óptica
La superresolución STED le permite estudiar simultáneamente múltiples eventos dinámicos, para que pueda investigar relaciones y mecanismos moleculares dentro del contexto celular.
DIVE – Experimentos in vivo profundos
DIVE y STELLARIS se han fusionado para proporcionarle la potencia de la obtención de imágenes multicolor multifotónicas flexible. Gracias a 4Tune, un detector no descaneado de espectro ajustable, puede definir hasta cuatro bandas de detección simultáneamente.
FALCON – FAst Lifetime CONtrast
Imágenes de tiempo de vida en un instante. STELLARIS 8 FALCON (FAst Lifetime CONtrast) es el futuro de las imágenes funcionales. Aproveche la potencia del tiempo de vida de la fluorescencia para investigar la fisiología celular y explorar la dinámica de las células vivas.
DLS – Digital Light Sheet
Con DLS puede beneficiarse de un microscopio confocal de lámina de luz completo y fácil de usar , que hará que su investigación sea más versátil.
Cryo – Imagen criogénica
STELLARIS Cryo es un sistema de criomicroscopio confocal que le ayuda a enfocar su área de interés para la tomografía crioelectrónica (CryoET). STELLARIS Cryo le ofrece la precisión necesaria para una localización fiable, a la vez que ofrece un rendimiento superior en el que puede confiar y protecciónde las muestras para sus experimentos.
CRS – Microscopía sin marcadores
El contraste de la imagen en CRS lo crean los estados vibracionales intrínsecos y característicos de las diferentes moléculas de la muestra. De este modo, no es necesario teñir la muestra, lo que elimina las desventajas de los métodos de obtención de imágenes a base de tintes, como el fotoblanqueo y los artefactos de teñido.
¿Qué es un microscopio confocal?
El microscopio de barrido láser confocal (CLSM) toma imágenes de muestras con seccionamiento óptico. El beneficio de la imagen confocal es el drástico aumento del contraste que genera la eliminación de la señal de fluorescencia fuera de foco. Es idóneo para imagen en time-lapse, la microscopía basada en tiempo de vida en fluorescencia (FLIM), experimentos FRAP (recuperación de fluorescencia después del fotoblanqueamiento), imagen FRET (transferencia de energía de resonancia de Förster) y las mediciones de espectroscopia de correlación de fluorescencia (FCS).
¿Para qué se utilizan los microscopios confocales?
Los microscopios confocales se suelen utilizar para la visualización y el análisis de estructuras subcelulares y biomoléculas, como proteínas, en muestras fijas y vivas. Puede obtener más información sobre las aplicaciones en las que se utiliza la microscopía confocal en Science Lab, el portal de conocimientos sobre microscopía de Leica Microsystems.
¿Cuándo se inventó el microscopio confocal?
En 1957, Marvin Minsky solicitó una patente que contenía por primera vez una descripción de un microscopio confocal funcional, pero esto fue ignorado en gran medida por la comunidad científica. El método se ha mejorado ampliamente a lo largo de los años gracias a los avances en la tecnología láser y los detectores. La microscopía confocal se convirtió en una técnica popular y aceptada generalmente en la década de 1980.
Microscopios confocales
Los microscopios confocales de Leica Microsystems son complementos adecuados en investigación biomédica de alta especialización, ya que ofrecen una precisión sin precedentes en la obtención de imágenes tridimensionales y el examen exacto de estructuras subcelulares y procesos dinámicos.
Imagen mosaico de un embrión de ratón
Imagen mosaico de alta resolución de un embrión de ratón consistente en 722 imágenes, con un total de 190 megapíxeles. Datos FLIM con cuatro tiempos de vida de fluorescentes característicos, codificados por color. Obtención: 1:23 h. Análisis: 1:00 h
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