U2OS-Zellen, die mit MitoTracker grün (Mitochondrienstruktur, cyan) und TMRE (aktive Mitochondrien, magenta) gefärbt sind. Sequenzielle Aufnahme der beiden Kanäle über 2 Minuten bei 100 Frames mit dem 63x/1.20 CS2 Water MotCORR Objektiv.
Sphäroid-Wachstum über 2,5 Tage
Bildung von 3D-Sphäroiden aus 1000 stabil transfizierten MDCK-MX1-GFP-Zellen pro Well (obere Reihe) und 1000 U2OS-Zellen pro Well (untere Reihe). Zeitrafferaufnahme über 60 Stunden mit 30 Minuten-Intervall. Grün, GFP. Schwarzweiß, integrierter Modulationskontrast.
Bildung von 3D-Sphäroiden aus 1000 stabil transfektierten MDCK MX1-GFP-Zellen pro Well (linke Hälfte) und 1000 U2OS-Zellen pro Well (rechte Hälfte), dargestellt zu 5 verschiedenen Zeitpunkten. Zeitrafferaufnahme über 60 Stunden mit 30 Minuten-Intervall. Grün, GFP. Grau, integrierter Modulationskontrast (IMC).
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Gewebeschnitt aus dem Rattenhirn. Zellkerne sind mit DAPI (blau), STL mit FITC (grün), Astrozyten (GFAP) mit Cy3 (gelb) und neue Neurone (NeuN) mit Cy5 (rot) gefärbt. 10x-Weitfeld, TileScan, alle 4 Label wurden gleichzeitig aufgenommen.
U2OS-Zellen, die mit MitoTracker grün (Mitochondrienstruktur, cyan) und TMRE (aktive Mitochondrien, magenta) gefärbt sind. Gleichzeitige Aufnahme der beiden Kanäle über 2 Minuten bei 100 Frames mit dem 63x/1.20 CS2 Water MotCORR Objektiv.
Sequentielle Erfassung mit einem konventionellen Mikroskop
Simultane Erfassung mit Mica
U2OS-Zellen, die mit MitoTracker grün (Mitochondrienstruktur, cyan) und TMRE (aktive Mitochondrien, magenta) gefärbt sind. Gleichzeitige Aufnahme der beiden Kanäle über 2 Minuten bei 100 Frames mit dem 63x/1.20 CS2 Water MotCORR Objektiv.
3D-Zellkultur, 7d Sphäroidbildung von U343 Zellen. tfLC3 EGFP und mRFP + DAPI + WGA Alexa680. Objektiv: 20x/0.75 CS2 DRY
Darmgewebeschnitt, aufgenommen mit verschiedenen Objektiven von geringer bis hoher Vergrößerung (1,6x, 10x, 20x, 63x), unter Verwendung von Weitfeld und konfokalem Imaging. 20x-Weitfeldbilder werden mit THUNDER und 63x-Konfokalbilder mit LIGHTNING verarbeitet. Kerne sind in Blau, Mitochondrien in Grün und detyrosiertes Tubulin in Rot markiert.
U2OS-Zellen wurden mit SiR-Actin, TMRE (Mitochondrienaktivität), CellEvent™ (Caspase-Aktivität) und DAPI (Zellkerne) markiert. Zum Zeitpunkt 0 wurde der Apoptose-Induktor Staurosporin zugegeben. 63-fache Vergrößerung, Weitfeldmodus. 13 Stunden-Zeitraffer.
Was wäre, wenn alle Wissenschaftler auf räumliche Informationen zugreifen könnten?
Treten Sie ein in die Ära des Zugangs für alle
Nun kann jeder Mikroskopie nutzen, um mehr Entdeckungen zu machen
Über 85 % der mühsamen Einrichtungsschritte, die spezielles Fachwissen erfordern, werden überflüssig
Gewebeschnitt aus dem Rattenhirn. Zellkerne sind mit DAPI (blau), STL mit FITC (grün), Astrozyten (GFAP) mit Cy3 (gelb) und neue Neurone (NeuN) mit Cy5 (rot) gefärbt. 10x-Weitfeld, TileScan, alle 4 Label wurden gleichzeitig aufgenommen.
85 % weniger Schritte bis zum ersten Bild
1/3 weniger Zeit bis zum ersten Bild
1/2 der Trainingszeit
Möglich durch:
Intelligente Automatisierung
Intelligentes Imaging
Treten Sie ein in die Ära der uneingeschränkten Möglichkeiten
Der Microhub: Alles, was Sie für Ihre Entdeckungen brauchen, vereint in einem benutzerfreundlichen System
4-mal mehr Daten mit
100 % Korrelation
Zugriff auf wichtige Kontextinformationen mit absoluter räumlich-zeitlicher Korrelation
U2OS-Zellen, die mit MitoTracker grün (Mitochondrienstruktur, cyan) und TMRE (aktive Mitochondrien, magenta) gefärbt sind. Sequenzielle Aufnahme der beiden Kanäle über 2 Minuten bei 100 Frames mit dem 63x/1.20 CS2 Water MotCORR Objektiv.
Sequentielle Erfassung mit einem konventionellen Mikroskop
U2OS-Zellen, die mit MitoTracker grün (Mitochondrienstruktur, cyan) und TMRE (aktive Mitochondrien, magenta) gefärbt sind. Gleichzeitige Aufnahme der beiden Kanäle über 2 Minuten bei 100 Frames mit dem 63x/1.20 CS2 Water MotCORR Objektiv.
Simultane Erfassung mit Mica
Mica liefert absolut korrelierte Label ohne räumlich-zeitliche Diskrepanz
Möglich durch:
4 Label gleichzeitig
4 Label 100 % korreliert
Patentierte FluoSync-Technologie
Nahtloser Wechsel von schneller Übersicht zu hoher Auflösung, wenn dies für Ihr Experiment erforderlich ist
Darmgewebeschnitt, aufgenommen mit verschiedenen Objektiven von geringer bis hoher Vergrößerung (1,6x, 10x, 20x, 63x), unter Verwendung von Weitfeld und konfokalem Imaging. 20x-Weitfeldbilder werden mit THUNDER und 63x-Konfokalbilder mit LIGHTNING verarbeitet. Kerne sind in Blau, Mitochondrien in Grün und detyrosiertes Tubulin in Rot markiert.
Übersicht erhalten
Finden Sie die Probenstruktur auf dem Träger und beobachten Sie die Gesamtmorphologie des Dickdarmschnittes. Identifizieren Sie einen Untersuchungsbereich für eine detailliertere Untersuchung.
Erhalten Sie mehr Details einer Substruktur
Der Wechsel zur nächsthöheren Vergrößerung ermöglicht die Beurteilung der Integrität des Gewebes und die Lokalisierung von Bereichen, die für eine weitere Analyse geeignet sind.
Wählen Sie die Zelle von Interesse
Beginnen Sie zunächst mit den kleineren Details und wählen Sie dann die einzelne Zelle aus, um subzelluläre Informationen zu erhalten. Einige Details bleiben jedoch hinter dem Schleier verborgen.
Wählen Sie die Zelle von Interesse
THUNDER ist die Methode der Wahl, um mehr Kontrast zu erhalten und mehr Details deutlich zu erkennen. So können Sie die richtige Auswahl treffen und tiefer in die Details der Probe vordringen.
Erhalten Sie die subzellulären Informationen
Wechseln Sie mit nur einem Klick vom Weitfeld- in den Konfokal-Modus, um weitere Informationen zu erhalten.
Erhalten Sie weitere subzelluläre Informationen
Durch das Hinzufügen von LIGHTNING erhalten Sie Zugang zu weiteren Details der subzellulären Strukturen, von der Übersicht bis zur hochauflösenden Darstellung ist alles nahtlos in den gesamten Workflow integriert.
Möglich durch:
Einheitliche Bildgebungsmodalitäten
Konfokales Pointscanning
Mica ist ein Inkubator
Bildung von 3D-Sphäroiden aus 1000 stabil transfizierten MDCK-MX1-GFP-Zellen pro Well (obere Reihe) und 1000 U2OS-Zellen pro Well (untere Reihe). Zeitrafferaufnahme über 60 Stunden mit 30 Minuten-Intervall. Grün, GFP. Schwarzweiß, integrierter Modulationskontrast.
Optimale physiologische Bedingungen während des gesamten Experiments
Bildung von 3D-Sphäroiden aus 1000 stabil transfektierten MDCK MX1-GFP-Zellen pro Well (linke Hälfte) und 1000 U2OS-Zellen pro Well (rechte Hälfte), dargestellt zu 5 verschiedenen Zeitpunkten. Zeitrafferaufnahme über 60 Stunden mit 30 Minuten-Intervall. Grün, GFP. Grau, integrierter Modulationskontrast (IMC).
Mica ist ein Inkubator, der Ihre Probe unter optimalen Bedingungen hält und die Verdunstung minimiert
Treten Sie ein in die Ära der drastisch vereinfachten Workflows
Gelangen Sie schneller von der Probe zur Entdeckung
Reduzieren Sie über 60 % der Prozessschritte durch Systemintelligenz
Konventionelle Mikroskope
Bei konventionellen Mikroskopen müssen Sie bei der Festlegung des Versuchsaufbaus von der Probe bis zur Analyse eine ganze Reihe von Schritten definieren.
Mica-Automatisierung
Mit Mica können Sie Zeit und Aufwand reduzieren, indem Sie Ihren Arbeitsablauf durch Systemintelligenz mit nur 8 Schritten von der Probe bis zum Ergebnis drastisch vereinfachen.
Möglich durch:
Probenfinder
OneTouch-Auto-Beleuchtung
KI-basierte Analyse
Reduzieren Sie Zeit und Arbeitsaufwand von der Probe bis zur Analyse, indem Sie Ihren gesamten Workflow vereinfachen
KI-basiertes Training der Mitochondrien-Segmentierung mit Ihrer wissenschaftlichen Expertise
U2OS-Zellen wurden mit SiR-Actin, TMRE (Mitochondrienaktivität), CellEvent™ (Caspase-Aktivität) und DAPI (Zellkerne) markiert. Zum Zeitpunkt 0 wurde der Apoptose-Induktor Staurosporin zugegeben. 63-fache Vergrößerung, Weitfeldmodus. 13 Stunden-Zeitraffer.
Ermöglicht 100 % Reproduzierbarkeit und Wiederholbarkeit während Ihres gesamten Experiments
Möglich durch:
Pixel Classifier
GUI-gesteuerte Kommentare
Wiederverwendbare KI-Modelle und Projektparameter
Hier ist Mica
Die Microhub-Ära ist angebrochen! Erleben Sie die Zukunft.
Lernen Sie Mica mit den wichtigsten Anwendungen kennen
Fluoreszenz-Multi-Well-Platten-Assay
Mit Mica können Sie vier Label gleichzeitig mit 100 % räumlich-zeitlicher Korrelation abbilden. Diese wichtige Anwendung zeigt, wie Mica mit fluoreszierenden Multi-Well-Platten-Assays für die Caspase 3/7-Aktivierung bei der Apoptose verwendet wird.
U2OS-Zellen wurden mit SiR-Actin, TMRE (Mitochondrienaktivität), CellEvent™ (Caspase-Aktivität) und DAPI (Zellkerne) markiert. Zum Zeitpunkt 0 wurde der Apoptose-Induktor Staurosporin (3μM) zugegeben. 63-fache Vergrößerung, Weitfeldmodus. 13 Stunden-Zeitraffer.
3D-Imaging für Gewebe
Mica ermöglicht Ihnen einen nahtlosen Übergang von einer schnellen Übersicht zu einer hohen Auflösung, wenn dies für Ihr Experiment erforderlich ist. Sehen Sie, wie Sie mit Mica eine detyrosinierte Tubulin-positive Zelle identifizieren und von der Übersicht zur Segmentierung des Tubulin-Netzwerks übergehen können.
Darmgewebeschnitt, aufgenommen mit 20-facher und 63-facher Vergrößerung mittels Weitfeld- und Konfokal-Imaging. 20x-Weitfeldbilder werden mit THUNDER und 63x-Konfokalbilder mit LIGHTNING verarbeitet. Kerne sind in Blau, Mitochondrien in Grün und detyrosiertes Tubulin in Rot markiert.
Langzeit-Zeitraffer
Mica ist ein Inkubator, der Ihre Probe unter physiologisch optimalen Bedingungen hält und die Verdunstung minimiert. Erfahren Sie, wie Sie mit Mica das Wachstum von Sphäroiden messen und die Proteinexpressionswerte analysieren können.
Bildung von 3D-Sphäroiden aus 1000 stabil transfizierten MX1-GFP-Zellen pro Well. Zeitrafferaufnahme über 72 Stunden mit 30 Minuten-Intervall. Grün, GFP. Grau, integrierter Modulationskontrast (IMC).
